一、模型選擇依據(jù)

1. 病原體類型
• 細菌：肺炎鏈球菌（Streptococcus pneumoniae）、肺炎克雷伯菌（Klebsiella pneumoniae）
• 病毒：流感病毒（H1N1）、SARS-CoV-2（需hACE2轉(zhuǎn)基因小鼠）
• 真菌：煙曲霉（Aspergillus fumigatus）
2. 研究目標
• 急性感染（3-7天） vs 慢性感染（2-4周）
• 局部肺炎 vs 全身性播散

二、細菌性肺炎模型（以肺炎鏈球菌為例）

1. 材料準備

• 菌株：臨床分離株或ATCC標準株（如ATCC 6303）
• 動物：C57BL/6或BALB/c小鼠（6-8周齡）
• 培養(yǎng)基：血瓊zhi平板、Todd-Hewitt肉湯

2. 操作步驟

1. 細菌培養(yǎng)：
• 接種菌株至血瓊zhi平板，37℃ 5% CO?培養(yǎng)16-18小時。
• 挑取單菌落接種至Todd-Hewitt肉湯，震蕩培養(yǎng)至OD600=0.5（約1×10^8 CFU/mL）。
2. 感染前處理：
• 離心收集細菌，PBS洗滌2次，重懸于無菌PBS（濃度根據(jù)預實驗調(diào)整，通常1×10^6-10^7 CFU/50 μL）。
3. 氣管內(nèi)滴注感染：
• 麻醉小鼠（異fu烷），垂直固定，用套guan針插入氣管，緩慢注入50 μL菌液。
• 立即旋轉(zhuǎn)小鼠使菌液均勻分布。

3. 關鍵參數(shù)

• 劑量：1×10^6 CFU/小鼠（致死率約50%）
• 觀察時間點：24h（早期炎癥）、72h（峰值期）、7天（恢復期）

三、病毒性肺炎模型（以流感病毒H1N1為例）

1. 材料準備

• 病毒株：A/Puerto Rico/8/34 (PR8)
• 動物：野生型C57BL/6小鼠
• 細胞：MDCK細胞（病毒擴增用）

2. 操作步驟

1. 病毒擴增與滴定：
• 接種病毒至MDCK細胞，48h后收集上清，測定TCID50（50%組織培養(yǎng)感染劑量）。
2. 鼻內(nèi)接種：
• 麻醉小鼠，仰臥位固定，用微量移液器滴注50 μL病毒液（1×10^3 TCID50）于鼻腔。
• 保持小鼠仰臥1分鐘確保吸入。

3. 關鍵參數(shù)

• 劑量：1×10^3 TCID50（導致體重下降15-20%）
• 觀察指標：
• 每日體重變化（下降≥20%需安樂si）
• 肺組織病毒載量（qPCR檢測NP基因）

四、真菌性肺炎模型（以煙曲霉為例）

1. 材料準備

• 菌株：煙曲霉臨床分離株（分生孢子濃度≥1×10^8/mL）
• 動物：免疫抑制小鼠（環(huán)lin酰胺150 mg/kg預處理）

2. 操作步驟

1. 孢子制備：
• 培養(yǎng)真菌于PDA平板，25℃ 5天，用0.05%      Tween-80 PBS收集孢子，過濾去除菌絲。
2. 氣管內(nèi)接種：
• 麻醉后注入50 μL孢子懸液（1×10^5-10^6孢子/小鼠）。

3. 關鍵參數(shù)

• 免疫抑制：環(huán)lin酰胺預處理72h后再感染
• 病理特征：Grocott染色觀察肺組織菌絲侵襲

五、表型驗證方法

六、注意事項

1. 生物安全：
• 病毒操作需在BSL-2實驗室，SARS-CoV-2需BSL-3。
2. 劑量優(yōu)化：
• 預實驗確定LD50（細菌）或ID50（病毒），避免過度致死。
3. 感染均一性：
• 氣管滴注時確保小鼠呼吸平穩(wěn)，避免誤入食管。
4. 模型局限性：
• 小鼠與人類肺部解剖差異（如無咳嗽反射），需謹慎解讀結果。